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    補(bǔ)體介導(dǎo)法細(xì)胞毒實(shí)驗(yàn)

    發(fā)布時(shí)間： 2021-11-01　　點(diǎn)擊次數(shù)： 1125次
    材料與儀器

    C57BL／6J小鼠
    Hank’s液 單克隆抗體 補(bǔ)體 伊紅-Y染液
    眼科剪 眼科鑷 平皿 不銹鋼網(wǎng) 試管 吸量管 尖吸管 載玻片 蓋玻片 顯微鏡

    實(shí)驗(yàn)步驟


    一、實(shí)驗(yàn)方法
     
    1.  小鼠胸腺細(xì)胞懸液的制備：將4～6周齡小鼠采用頸椎脫臼法處死，取出胸腺放入已加入約4 ml冷Hank’s液的平皿中，在100目的不銹鋼網(wǎng)上研磨后，過(guò)篩，放入試管，離心1 000 rpm，5分鐘，用Hank’s液洗兩次。將沉淀的細(xì)胞重懸于Hank’s液中，配成1×107/ml細(xì)胞懸液。
     
    2.  取試管3支，標(biāo)明順序，依據(jù)下表依次加入1×107/ml胸腺細(xì)胞懸液、抗小鼠Thy-1的單克隆抗體(最適稀釋度)及Hank’s液，放入37℃水浴30分鐘。
     
    3.  取出后每管加入1%伊紅-Y染液1滴，混勻，室溫放置2分鐘。
     
    4.  重新混勻后分別在一張載玻片上滴片，加蓋玻片鏡檢。先在低倍鏡下觀察，再用高倍鏡觀察，比較3管中細(xì)胞死活情況。
     
    二、實(shí)驗(yàn)結(jié)果
     
    死細(xì)胞呈紅色，無(wú)光澤且腫脹變大；活細(xì)胞不著色、有光澤且形態(tài)正常。
     
    高倍鏡下計(jì)數(shù)200個(gè)細(xì)胞并計(jì)算其中死細(xì)胞的百分?jǐn)?shù)。計(jì)算公式如下：死細(xì)胞百分?jǐn)?shù)= EQ EQ \F(實(shí)驗(yàn)管死細(xì)胞數(shù)%-對(duì)照管死細(xì)胞數(shù)%，100%-對(duì)照管死細(xì)胞數(shù)%)



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